Super Red核酸染料(10,000×H₂O) AMS354B -0.5ml

产品特点：

1、无毒性：Super Red独特的油性大分子特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内，艾姆斯 氏试验结果也表明，该染料的诱变性远远小于EB。

2、灵敏度高：适用于各种大小片段的电泳染色，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。

3、 稳定性高：适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶；室温下在酸或碱缓冲 液中极其稳定，耐光性强。

4、信噪比好：样品荧光信号强，背景信号低，荧光强度是EB 的十倍以上，肉眼可观测 到亮度明显比EB 强。

5、操作简单：与EB 样，在预制胶和电泳过程中染料不降解；而电泳后染色过程也只 30分钟且无脱色或冲洗，即可直接用紫外凝胶透射仪观察。

6、适用范围广：可选择电泳前染色(胶染法)或电泳后染色(泡染法);适用于琼脂 糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳：可用于dsDNA、ssDNA  或 RNA 染色。

7、完美兼容：与EB 有相同的光谱特性，无改变滤光片及观察装置：标准的EB 滤光  片或SYBR 滤光片都适用，使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可，在300nm紫光外光附近可得到佳激发。但是Super Red不能被488nm氩离子激光器或相似波长的可见光完全激发，因此不推荐使用此类激发装置的成像系统。对于此类装置，我们推荐您使用Super Green, 它和SYBR Green I的光谱相似，灵敏度相当，但更加稳定。

使用方法：

1、胶染法(用法同EB)  (推荐方法)

(1)制胶时加入Super Red核酸染料(例如：每50mL  琼脂糖溶液中加入5μLSuper Red

10,000×储液，以此比例类推)。

(2)按照常规方法进行电泳。

注意事项：

此方法染色染料用量相对较少。500 μL 染料大约可以做100块50mL 的胶。

由于Super Red具有良好的热稳定性，可以在热的琼脂糖溶液中直接添加，而不要等 待溶液冷却。摇晃振荡或者翻转以保证染料充分混。也可以选择将Super Red加到琼脂糖 粉末和电泳缓冲液中，然后用微波炉或其他常用方式加热：以制备琼脂糖凝胶。 Super Red兼容所有常用的电泳缓冲溶液。

如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。 如果染色后问题依旧存在，则说明问题与染料无关，请尝试：降低琼脂糖浓度；选用更长的凝胶；延长凝胶时间以保证边缘清晰；改进上样技巧或选择泡染法染色。

此方法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶，对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。

2、泡染法

(1)按照常规方法进行电泳。

(2)用H₂O 将Super Red 10000×储液释约3,300倍到0.1 M NaCl 中，制成3×染色液。(例 如将15 μL Super Red 10000×储液和5mL 1 M NaCl 加到45 mL H₂O中 ) 。

(3)将凝胶小心地放入合适的容器中，如聚丙烯容器中。缓慢加入足量的3×染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右，佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于含3.5～10%丙烯酰胺的凝胶，染色时间通常介于30min到1h, 并随丙烯酰胺含量增加而延长。

注意事项：

用泡染法染色时，染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。

3×Super Red染色液可以大量制备，在室温下避光保存直至用完。

特别提醒：

如果您使用的是紫外成像仪，请选择Super Red; 如果您使用激光成像仪或希望在可见光下观测，请选择Super Green。

在极少数情况下，质粒经某些酶切后的DNA样品会出现拖尾和分辨率降低，此时建议同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更加合适。

注意事项：

为了您的安全和健康，请穿实验服并戴次性手套操作。

保存方法：

2-8℃避光干燥保存，有效期24个月。