Super Red核酸染料(10,000×H₂O) AMS354B -0.5ml

Super Red核酸染料(10,000×H₂O) AMS354B -0.5ml
  • Super Red核酸染料(10,000×H₂O) AMS354B -0.5ml

  • 货 号 :
  • 价 格 : ¥420.00
  • 品牌 : Aomabio/奥玛
  • 所属大类 : 试剂
  • 所属小类 : 分子生物学试剂

产品细节图:

详细介绍

产品特点:

1、无毒性:Super Red独特的油性大分子特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内,艾姆斯 氏试验结果也表明,该染料的诱变性远远小于EB。

2、灵敏度高:适用于各种大小片段的电泳染色,对核酸迁移的影响小于SYBR Green I

3、 稳定性高:适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶;室温下在酸或碱缓冲 液中极其稳定,耐光性强。

4、信噪比好:样品荧光信号强,背景信号低,荧光强度是EB 的十倍以上,肉眼可观测 到亮度明显比EB 强。

5、操作简单:与EB 样,在预制胶和电泳过程中染料不降解;而电泳后染色过程也只 30分钟且无脱色或冲洗,即可直接用紫外凝胶透射仪观察。

6、适用范围广:可选择电泳前染色(胶染法)或电泳后染色(泡染法);适用于琼脂 糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳:可用于dsDNA、ssDNA  或 RNA 染色。

7、完美兼容:与EB 有相同的光谱特性,无改变滤光片及观察装置:标准的EB 滤光  片或SYBR 滤光片都适用,使用与观察EB相同的普通紫外凝胶透射仪观察即可,在300nm紫光外光附近可得到佳激发。但是Super Red不能被488nm氩离子激光器或相似波长的可见光完全激发,因此不推荐使用此类激发装置的成像系统。对于此类装置,我们推荐您使用Super Green, 它和SYBR Green I的光谱相似,灵敏度相当,但更加稳定。

使用方法:

1、胶染法(用法同EB)  (推荐方法)

(1)制胶时加入Super Red核酸染料(例如:每50mL  琼脂糖溶液中加入5μLSuper Red

10,000×储液,以此比例类推)。

(2)按照常规方法进行电泳。

注意事项:

此方法染色染料用量相对较少。500 μL 染料大约可以做100块50mL 的胶。

由于Super Red具有良好的热稳定性,可以在热的琼脂糖溶液中直接添加,而不要等 待溶液冷却。摇晃振荡或者翻转以保证染料充分混。也可以选择将Super Red加到琼脂糖 粉末和电泳缓冲液中,然后用微波炉或其他常用方式加热:以制备琼脂糖凝胶。 Super Red兼容所有常用的电泳缓冲溶液。

如果总是看到条带弥散或分离不理想,建议使用泡染法染色以确认问题是否与染料有关。 如果染色后问题依旧存在,则说明问题与染料无关,请尝试:降低琼脂糖浓度;选用更长的凝胶;延长凝胶时间以保证边缘清晰;改进上样技巧或选择泡染法染色。

此方法不适合预制聚丙烯酰胺凝胶,对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法。

2、泡染法

(1)按照常规方法进行电泳。

(2)用H₂O 将Super Red 10000×储液释约3,300倍到0.1 M NaCl 中,制成3×染色液。(例 如将15 μL Super Red 10000×储液和5mL 1 M NaCl 加到45 mL H₂O ) 。

(3)将凝胶小心地放入合适的容器中,如聚丙烯容器中。缓慢加入足量的3×染色液浸没凝胶。室温振荡染色30 min左右,佳染色时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于含3.5~10%丙烯酰胺的凝胶,染色时间通常介于30min到1h, 并随丙烯酰胺含量增加而延长。

注意事项:

用泡染法染色时,染料用量较多。单次使用的染色液可重复使用3次左右。

3×Super Red染色液可以大量制备,在室温下避光保存直至用完。

特别提醒:

如果您使用的是紫外成像仪,请选择Super Red; 如果您使用激光成像仪或希望在可见光下观测,请选择Super Green。

在极少数情况下,质粒经某些酶切后的DNA样品会出现拖尾和分辨率降低,此时建议同时尝试两种染色方法以决定哪种方法更加合适。

注意事项:

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴次性手套操作。

保存方法:

2-8℃避光干燥保存,有效期24个月。



分享到:
点击次数:  更新时间:2014-05-23 17:55:11  【打印此页】  【关闭